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KI小鼠模型構建

簡要描述:基因敲入(Knock-in, KI)小鼠通過在基因組特定位點精準插入外源序列(如報告基因、人類疾病突變或條件性表達元件),是研究基因功能調控、人類疾病模擬和藥物測試的核心工具

  • 更新時間:2025-06-26 17:14:44
  • 訪  問  量:16

詳細介紹

一、KI小鼠模型構建技術路線選擇

方法

周期

插入片段限制

適用場景

CRISPR-HDR

2-4個月

<5 kb

快速構建短片段KI(如點突變、FLAG標簽)

ES細胞同源重組

6-12個月

無限制

大片段插入(如Cre重組酶、人源化基因)

CRISPR-轉座子/病毒

3-5個月

10-50 kb

超大片段插入(如BAC轉基因替代)




二、KI小鼠模型構建CRISPR-HDR方案(短片段插入推薦)

1. 靶點設計與供體制備

  • gRNA設計

    • 靶向插入位點(避開功能域),使用CHOPCHOP優(yōu)化效率。

  • 供體DNA設計

5'同源臂 60-100nt

目標序列+篩選標記*

3'同源臂 60-100nt

    • 化學修飾:ssODN(單鏈)需3'硫代磷酸酯化,dsDNA(雙鏈)需磷酸化。

    • 沉默突變:在gRNA靶區(qū)引入1-2 bp突變防止重切(必需?。?。

2. 受精卵注射

  • 注射混合物

    • Cas9蛋白 (50 ng/μL) + gRNA (25 ng/μL) +       ssODN/dsDNA (100 ng/μL)。

  • 胚胎移植

    • 移植20-30個注射后胚胎至假孕母鼠。

3. 基因型鑒定

  • PCR策略

    • 外側引物(同源臂外) + 內側引物(插入序列內)→ 僅陽性鼠能擴增。

    • 測序驗證:確保插入序列無indel突變。

4. 品系建立

  • F0嵌合體:與野生型交配,篩選生殖系傳遞后代(通常50%概率)。




三、ES細胞同源重組方案(大片段KI)

1. 靶向載體構建

5'同源臂 1.5-3kb

目標序列

FRT-flanked NeoR

3'同源臂 1.5-3kb

DTA負選標記

  • 關鍵元件

    • 同源臂:長度與插入片段正相關(>5 kb插入需≥3 kb同源臂)。

    • 篩選標記:NeoR(后續(xù)可通過Flp刪除)。

2. ES細胞操作

  • 電轉與篩選

    • G418(NeoR)篩選10-14天,Pick 200-300個克隆。

  • 陽性克隆驗證

    • 長片段PCR(覆蓋整個插入區(qū)域)。

    • Southern blot:確認單拷貝整合。

3. 小鼠制備

  • 囊胚注射:將陽性ES細胞注入C57BL/6N囊胚。

  • 傳代:嵌合體與Flp deleter小鼠交配刪除NeoR。




四、條件性KI(cKI)附加設計

1. 雙loxP系統(tǒng)

  • 策略:在目標基因前插入loxP-stop-loxP(LSL)結構,與Cre小鼠交配后激活表達。

  • 應用

    • 報告基因:Rosa26-LSL-tdTomato。

    • 致癌基因:Kras-LSL-G12D。

2. 誘導型系統(tǒng)

  • Tet-On:rtTA + TRE-目標基因,需多xi環(huán)素誘導。




五、經典KI模型案例

插入類型

應用

代表模型

點突變

模擬人類遺傳?。ㄈ鏏PP突變)

APP-KI(阿爾茨海默?。?/p>

報告基因

細胞譜系追蹤

Rosa26-CAG-LSL-GFP

人源化基因

藥物測試

hCYP3A4-KI(代謝研究)




六、關鍵優(yōu)化策略

  1. 提高HDR效率

    • 添加HDR增強劑(如Rad51 mRNA或RS-1)。

    • 使用Cas9變體(如Cas9-D10A nickase)。

  2. 減少隨機整合

    • 線性化供體DNA(避免質粒骨架整合)。

  3. 表型驗證

    • mRNA水平:qPCR檢測插入基因表達。

    • 蛋白水平:抗體檢測(如HA/FLAG標簽)。

 


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